Информация

Идентификация на Lepidopteran

Идентификация на Lepidopteran


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Опасявам се, че качеството на телевизионната картина по-долу не е много добро, но може ли някой да идентифицира този молец? Това беше един от тези, които нахлуха на терена на Еврофинала в Париж на 10 юли 2016 г.


Не съм гледал играта, но от това, което видях в интернет, беше Silver Y (Автографа гама), нарисуван там от светлините по време на миграция http://theconversation.com/moths-expert-match-report-on-ronaldo-insect-encounter-at-euro-2016-final-62314


Не можех да бъда напълно сигурен само от тази снимка, така че потърсих наоколо и се оказа, че е Autographa Gamma (Silver Y)


Биологията и управлението на ушите, хранещи се с лепидоптери, вредители по царевицата в Небраска

Четири вредители от чешуекрыли, които може да срещнете, хранейки се с царевични класове в Небраска, са европейският царевичен пробивач (Ostrinia nubilalis), западен бобен червей (Sriacosta albicosta), царевичен ушен червей (Helicoverpa zea), и есен армейски червей (Spodoptera frugiperda).

Европейски царевичен борд

Западен бобов червей


Царевичен ушен червей

Есенен армейски червей

• Плоските, овални яйца с размер на щифтова глава се превръщат от бели в черни преди излюпване

• Белезникавосивите ларви имат малки кафяви/черни петна и лъскава черна глава

• Жълтеникави женски и по-тъмни мъжки имат вълнообразни ивици напречно на крилата

• Яйцата с размер на щифтова глава се превръщат от перлено бели в лилави преди да се излюпят

• Младите, тъмнокафяви ларви имат слаби диамантови белези на гърба си

• По-старите сиви до розови ларви имат два кафяви правоъгълника зад главата

• Възрастните имат светлокафява ивица, бяло „очно петно“ и бяло петно ​​във формата на дъга на крилата си

• Малките яйца са светложълти

• Ларвите се различават по цвят, но имат редуващи се светли и тъмни ивици и тъмни неравности по дължината на тялото

• Яйцата с форма на купол са мръсно-бели до сиви и имат мухлясал или космат вид

• Тъмнозелените ларви имат жълти/оранжеви ивици отстрани и гърбовете си и бяла, обърната с главата надолу, Y-образна маркировка на главата си.

• Сивкави, петнисти възрастни имат бели петна близо до върховете на крилата

• Зимува като ларви в царевични стъбла и какавидира през пролетта

• Женските снасят яйца от долната страна на листата на царевицата, често в средната трета на растението

• Ларвите, присъстващи преди пискюл, се придвижват към долната част на дръжката

• Ларвите се появяват след пробиване на тунел в дръжката или ухото

• Две поколения годишно в Небраска

• Зимува като предкаавиди в почвата

• Женските снасят яйца от горната страна на листата на царевицата

• Младите ларви се хранят с цветен прашец, тъкан от пискюли или зелена коприна

• По-старите ларви тунелират в ушите, за да се хранят с развиващите се ядки, преди да пуснат в почвата, за да се окаквичат

• Зимува като какавиди в почвата, но не и в Небраска

• Възрастните се връщат от юг всяка година

• Женските снасят яйца поотделно върху коприна за уши

• Ларвите тунелират в ушите, за да се хранят с развиващите се ядки, преди да паднат в почвата, за да се окуктурят

• Няколко поколения годишно в по-топъл климат

• Обикновено две поколения годишно в Небраска

• Зимува като какавиди в почвата, но не и в Небраска

• Възрастните се връщат от юг всяка година

• Женските снасят яйца върху незрели листа на растението

• Ларвите се хранят с въртяща се тъкан или тунел директно в ушите, за да се хранят с развиващите се зърна, преди да пуснат в почвата, за да се окавидят

• Няколко поколения годишно в по-топъл климат

• Обикновено две поколения годишно в Небраска

• В цялата страна, но най-често в централните и западните региони

• Често срещан в райони, където преобладават непрекъснати царевични или песъчливи почви

• Напада също сорго, соя, овощни и зеленчукови култури

• В цялата страна, но най-често на изток

• Също така атакува соята и някои дребни зърна

• 1-во поколение: края на юни до началото на юли

• 2-ро поколение: края на юли, август и понякога началото на септември

• Ларвите могат да бъдат намерени от юли до септември

• Възрастните пристигат през юни и юли от юг

• Ларвите се намират в края на юли до септември

• Възрастните пристигат през юни и юли от юг

• Ларвите се откриват в края на юли до септември

• 1-во поколение: въртеливи и околни листа с вид на „изстреляна дупка“.

• 2-ро поколение: Ушите, дръжките и кочаните с повреда при хранене и отвори за влизане

• Повредени уши, които могат да съдържат множество ларви

• Увредените уши може да имат вторична гъбична инфекция

• 2-ро поколение: Повредени уши, които обикновено съдържат една ларва

• Увредените уши може да имат вторична гъбична инфекция

• 1-во поколение: Растения с увредени навивки, обезлистване и закърняване

• 2-ро поколение: Увредени уши с потенциална вторична гъбична инфекция

Скаутски препоръки

***Обърнете внимание, че пиковият полет на молец може да се определи чрез улавяне на феромони и светлинни капани и да се използва за информиране на програмите за разузнаване на полето

• 1-во поколение: Разгледайте 25 царевични въртелки на всяко от 4 места във всяко поле

• Пребройте броя на въртелите на растенията с увреждане при хранене и броя на живите ларви на растение

• Изчислете средния брой живи ларви на увредено растение

• 2-ро поколение: Изберете 10 растения на всяко от 5 места във всяко поле и пребройте масите на яйцата

• Помислете за третиране, ако икономическият праг от 25-50% от растенията с яйцесна маса е надвишен и царевицата е в стадий на блистер или по-рано

• Изберете 10 растения в 5 или повече области от всяко поле

• Огледайте повърхността на царевичните листа в горната трета на растението за яйчни маси и пискюла, пазвите на листата и върховете на ушите за млади ларви

• Лечението се препоръчва, ако 5-8% от растенията са заразени с яйца или ларви и ако царевицата е поне 95% с пискюли

• Ако царевицата е на етап мляко преди снасянето на яйцата, не е необходимо лечение

• Прегледайте коприните за яйца и накрайниците на ушите за малки ларви през периода на зелено копринене

• Обработката обикновено не е икономически оправдана за полска царевица

• Царевица за семена, пуканки и сладка царевица може да изискват третиране

• Разгледайте късно засадените ниви, когато достигнат V5-V8

• Прегледайте накрайниците на ушите за наличие на ларви

• Праговете на лечение се основават на нивата на обезлистване и потенциала за навлизане на ларви в ухото

Препоръки за управление

***Обърнете внимание, че приложенията с пестициди са ефективни само ако достигнат ларвите, преди да са проникнали в дръжката (ECB) или да влязат в ушите (WBC, CEW и FAW)

• Засадете царевица с една или повече от следните характеристики: Cry1Ab, VIP3A, Cry1F, Cry1A.105 и Cry2Ab2.

• Помислете за засаждане на местно адаптирани сортове, които имат известна устойчивост на ECB и дават добър добив.

• Решението за третиране на едното и от друго поколение на ЕЦБ е сложно, моля, консултирайте се с подходящия NebGuide за насоки.

• Засадете царевица с признаци VIP3A или Cry1F.

• Имайте предвид, че ефикасността на Cry1F е намаляла в някои области DuPont Pioneer вече не изброява WBC като вредител, контролиран от Cry1F.

• Полета на Scout Cry1F в области, където е наблюдавана намалена ефикасност, като югозападна и централна Небраска, и помислете за лечение, ако праговете са надвишени.


Текущи изследователски проекти

Хромозомни и молекулярни механизми за определяне на пола в Lepidoptera

Молците и пеперудите (Lepidoptera) имат полови хромозомни системи с женска хетерогаметия (WZ/ZZ, Z/ZZ), но действителният механизъм на определяне на пола е до голяма степен неизвестен. Едва наскоро основният определящ пола фактор беше открит в копринената буба, Bombyx mori. Неговата W хромозома кодира Fem piRNA, която насърчава женствеността чрез понижаване на експресията на Z-свързан ген, Маскулинизатор, насърчаване на мъжкото развитие при отсъствие на W. Въпреки това води до диви копринени молци Самия Синтия spp. поставят под въпрос ролята на W при определянето на женския пол и подкрепят Z-броящия механизъм. Напротив, последните ни резултати показват, че Fem piRNA/Masc пътеката може да бъде запазена в пиралидни молци. Следователно, ние изучаваме молекулярните механизми за определяне на пола при видове със стабилна WZ/ZZ система и тези с незаменим или отсъстващ W. Ние идентифицираме ортолози на гените, определящи пола, и анализираме тяхната експресия и функция, използвайки транскриптомни последователности и налични методи на молекулярна генетика. Нашата цел е да допринесем за разбирането на еволюцията на определянето на пола при Lepidoptera.

Молекулярна диференциация и еволюционна история на половите хромозоми в Lepidoptera

Половите хромозоми и тяхната диференциация принадлежат към най-интересните въпроси на еволюционната генетика. При животни преобладаващото мнозинство от данните за еволюцията на половите хромозоми са получени в организми с мъжка хетерогаметия (т.е. с XY полови хромозомиome системи) като мухи и бозайници. Много по-малко се знае за организмите с женска хетерогаметия, притежаващи WZ полова хромозомна система или нейни вариации. Това особено се отнася до молците и пеперудите (Lepidoptera), най-голямата животинска група с женски хетерогамети. В избрани модели ние изучаваме физическите характеристики на геномите на лепидоптерните, извършваме синтенно картографиране на запазени гени и изследваме молекулярната диференциация на половите хромозоми с цел да разкрием еволюционната история на кариотипите на лепидоптерните и да допринесем за разбирането на общите механизми на еволюцията на половите хромозоми.

Разработване на генерични стратегии за конструиране на генетични щамове по пол при вредители Lepidoptera

През последните 25 години техниката за стерилни насекоми (SIT) беше успешно приложена срещу няколко основни вредители от лепидоптери. Програмите, използващи SIT за контрол на популациите от тези вредители, разчитат на бисексуални изпускания. Изданията само за мъже биха могли значително да намалят разходите и да повишат ефективността на SIT. Въпреки това, удобна генетична система за определяне на пола за производство на потомство само от мъже все още не е налична при нито един вредител Lepidoptera. Ние сме разработване на генерични стратегии за конструиране на генетични щамове на пола в Lepidoptera по два начина: (1) чрез вмъкване на условен смъртоносен ген в специфичната за жените W полова хромозома, като се използва редактиране на генома за прекратяване на развитието на женски ембриони и (2) чрез идентификация на гени, участващи в определянето на пола с цел откриване на нови възможности за генетично определяне на пола. Като основен моделен вид ние използваме треската, Cydia pomonella, който е ключов вредител по семките и ореховите градини в умерените райони на света. Това изследване е част от международен проект, координиран от МААЕ (Виена, Австрия).

Идентифициране и анализ на повторения, оформящи геноми на лепидоптери и полови хромозоми

Повтарящата се ДНК е присъщ компонент на еукариотните геноми. Известно е, че тандемните повторения играят решаваща роля в поддържането на целостта и функцията на хромозомите, тъй като се срещат в центромерите и теломерите. Те са и най-бързо развиващите се последователности в геномите. Подвижните елементи, егоистичната ДНК, оформят генома чрез множество механизми, които водят напр. до промяна на модела на генна транскрипция или генериране на структурни хромозомни аберации. Те често се срещат в компактни геномни региони, т.е. хетерохроматин. При молците и пеперудите обикновено единственият голям хетерохроматинов блок е W хромозомата, полова хромозома, уникална за женските, за която е известно, че е бедна на гени и е богата на повторения. В този проект ние изучаваме повтарящи се последователности, които допринасят за дегенерацията на W хромозомата при представители на различни семейства, като Pieridae, Geometridae и Noctuidae, с цел да се открие възможна между- и интраспецифична вариабилност както в местоположението, така и в изобилието от индивидуални повторения на W и другаде в генома и евентуално идентифициране на механизми, водещи до диверсификация на W и Z хромозомите. За тази цел ние извършваме сравнителен анализ на мъжки и женски геноми, използвайки биоинформационни инструменти като RepeatExplorer и Tandem Repeats Finder. След това избраните повторения се картират чрез флуоресценция на място хибридизация (FISH), за да покажат тяхното точно местоположение върху хромозомите.

Фигура: Анализ на повтаряща се ДНК в Lepidoptera. а) Сравнителната геномна хибридизация идентифицира W хромозома в Tischeria ekebladella (Tischeriidae). б) FISH картографиране на микросателит в Lomaspilis marginata (Geometridae) от FISH. ° С) FISH картографиране на W-обогатена сателитна последователност в Пиерис напи (Pieridae). д) Променливост на присъствието и съдържанието на хетерохроматинови блокове в L. marginata разкрито чрез оцветяване с FISH и DAPI. В б, ° С, и д, хромозомите са противооцветени с DAPI (синьо), хибридизационните сигнали на сондите са червени. Бар = 10 um


Съдържание

Подобно на други членове на надразред Holometabola, Lepidoptera претърпяват пълна метаморфоза, преминавайки през четиристепенен жизнен цикъл: яйце, ларва / гъсеница, какавида / chrysalis и имаго (множествено число: си представя) / възрастен. [9]

Lepidopterans варират по размер от няколко милиметра на дължина, като например в случая на microlepidoptera, до размах на крилете от много инча, като например атлаския молец и птичето крило на кралица Александра на най-голямата пеперуда в света. [10] : 246

Общ план на тялото Редактиране

Тялото на възрастна пеперуда или молец (имагото) има три отделни деления, наречени тагмати, свързани в стеснения, тези тагмати са главата, гръдния кош и корема. Възрастните лепидоптери имат четири крила - предно и задно крило както от лявата, така и от дясната страна на гръдния кош - и, както всички насекоми, три чифта крака. [11]

Морфологичните характеристики, които отличават разред Lepidoptera от другите разредове на насекоми са: [10] : 246

  • Глава: Главата има големи сложни очи и, ако има устни апарати, те почти винаги са хобот, подобен на сламка за пиене.
  • Везни: Люспите покриват външната повърхност на тялото и придатъците.
  • Гръден кош: Протораксът обикновено е намален.
  • Крила: Два чифта крила присъстват в почти всички таксони. Крилата имат много малко напречни жилки.
  • корема: Задните коремни сегменти са силно модифицирани за възпроизвеждане. Cerci отсъстват.
  • ларва: Ларвите на Lepidoptera са известни като гъсеници и имат добре развита глава и долни челюсти. Те могат да имат от нула до пет чифта прокрака, обикновено четири.
  • Какавида: Какавидите при повечето видове са адектични (без функционални долни челюсти в състояние на какавида) и обтечни (със придатъци, слети или залепени към тялото), докато други са дектични (с функционални долни челюсти, присъстващи в състояние на какавида) и ексарат (имащи антени, крака и крила свободни).

Отличителни таксономични характеристики Редактиране

Основните характеристики, използвани за класифициране на видове, родове и семейства на лепидоптери са: [12]

  • устните органи
  • формата и жилка на крилата
    • дали крилата са еднородни (жилковането на предните и задните крила еднакво) или хетероневрни (предните и задните крила са различни)
    • дали крилата са заострени (повече или по-малко покрити със специализирани влакна, наречени microsetae) или ненакулеатни
    • вида на съединителя на крилото (югат или френат)

    Морфологичните характеристики на гъсениците и какавидите, използвани за класификация, са напълно различни от тези на възрастните [13] : 637 [14] различни схеми за класификация понякога се предоставят отделно за класифициране на възрастни, ларви и какавиди. [14] [15] : 28–40 Характеристиките на незрелите стадии се използват все по-често за таксономични цели, тъй като те дават представа за систематиката и филогенията на Lepidoptera, които не са очевидни при изследване на възрастни. [15] : 28

    Както всички животински глави, главата на пеперудата или молецът съдържа хранителните органи и основните органи на сетивата. Главата обикновено се състои от две антени, две сложни очи, две палпи и хобот. [11] Lepidoptera имат оцели, които могат или не могат да бъдат видими. Те също имат сетивни структури, наречени chaetosemata, чиито функции са до голяма степен неизвестни. Главата е изпълнена до голяма степен от мозъка, смукателната помпа и свързаните с нея мускулни снопове. [16] За разлика от възрастните, ларвите имат едносегментни мандибули. [16]

    Капсулата на главата е добре склеротизирана и има редица склерити или плочи, разделени от шевове. Склеритите са трудни за разграничаване бразда (единствено число – бразда), които са вторични удебеления. Регионите на главата са разделени на редица области, които служат като топографско ръководство за описание от лепидоптеристи, но не могат да бъдат дискриминирани по отношение на тяхното развитие. [16] Главата е покрита с косоподобни или ламеларни люспи и се среща или като кичури по предни или връх (така наричаното грубо мащабиран) или притиснат близо до главата (наричан като гладко мащабирани).

    Сетивните органи и структури на главата показват голямо разнообразие, а формата и формата на тези структури, както и тяхното присъствие или отсъствие, са важни таксономични показатели за класифициране на таксони в семейства. [13]

    Глава на молец от семейство Gracillariidae, показваща степен на люспи на главата

    Грубо люспеста глава на молец Monopis icterogastra (семейство Tineidae)

    Гладко люспеста глава на молец Стегаста вариана (семейство Gelechiidae)

    Редактиране на антени

    Антените са изпъкнали сдвоени придатъци, които стърчат напред между очите на животното и се състоят от редица сегменти. При пеперудите дължината им варира от половината дължина на предното крило до три четвърти от дължината на предното крило. Антените на пеперудите са или тънки и на върха на дръжки, а в случая на Hesperiidae са закачени на върха. В някои родове пеперуди като напр Ливитея и Тарактротера копчето е вдлъбнато отдолу. [11] Антените на молец са или нишковидна (като нишка), еднопръстен (като гребен), бипектинат (подобно на пера), закачени, с тояга или удебелени. [13] : 636 Мандарина Bombyx е пример с бипектинатни антени. [17] Някои пеперуди имат антени, подобни на тези на пеперудите, включително семействата Castniidae, Neocastniidae и Euschemonidae. [18]

    Антените са основните органи на обонянието (миризмата) при Lepidoptera. Повърхността на антената е покрита с голям брой обонятелни люспи, косми или дупки, до 1 370 000 се намират на антените на монарх. Антените са изключително чувствителни, пернатите антени на мъжките молци от Saturniidae, Lasiocampidae и много други семейства са толкова чувствителни, че могат да открият феромоните на женските молци от разстояния до 2 km (1,2 мили). Антените на Lepidoptera могат да бъдат наклонени в много позиции.Те помагат на насекомото при локализиране на миризмата и може да се счита, че действат като един вид „обонятелен радар“. [6] При молците мъжките често имат антени, които са по-перасти от тези на женските, за откриване на женските феромони от разстояние. [7] Тъй като женските не трябва да откриват мъжките, те имат по-прости антени. [6] Установено е също, че антените играят роля в компенсираната във времето ориентация на слънчевия компас при мигриращите пеперуди монарх. [19]

    Редактиране на очите

    Lepidoptera имат две големи, неподвижни сложни очи, които се състоят от голям брой фасети или лещи, всяка от които е свързана с подобен на леща цилиндър, който е прикрепен към нерв, водещ към мозъка. [11] Всяко око може да има до 17 000 отделни светлинни рецептора (омматидии), които в комбинация осигуряват широка мозаечна гледка на околността. [6] Едно тропическо азиатско семейство, Amphitheridae, има сложни очи, разделени на два отделни сегмента. [13] [20] Очите обикновено са гладки, но могат да бъдат покрити с малки косъмчета. Очите на пеперудите обикновено са кафяви, златистокафяви или дори червени, както в случая на някои видове шкипери. [11]

    Докато повечето насекоми имат три прости очи, или оцели, само два очила присъстват във всички видове Lepidoptera, с изключение на няколко молци, по един от всяка страна на главата близо до ръба на сложното око. При някои видове сетивни органи, наречени chaetosemata, се намират близо до оцелите. [11] [21] Оцелите не са хомоложни на простите очи на гъсениците, които са наречени по различен начин като stemmata. [5] Оцелите на Lepidoptera са намалени външно в някои семейства, където присъстват, те са нефокусирани, за разлика от стъблата на ларвите, които са напълно фокусирани. Понастоящем полезността на ocelli не е разбрана. [5]

    Пеперудите и молците са в състояние да виждат ултравиолетова (UV) светлина, а цветовете и моделите на крилата се наблюдават основно от Lepidoptera в тези дължини на вълната на светлината. [13] Моделите, наблюдавани на крилото им под UV светлина, се различават значително от тези, наблюдавани при нормална светлина. UV моделите действат като визуални знаци, които помагат да се разграничат видовете с цел чифтосване. Проведени са изследвания върху модели на крила на Lepidoptera (предимно пеперуди), осветени от UV светлина. [13]

    Palpi Edit

    Обикновено лабиалните палпи са изпъкнали, трисегментни, извиващи под главата и извиващи се нагоре пред лицето. [7] Има големи вариации в морфологията на лабиалните палпи в различните семейства на Lepidoptera понякога палпите са отделни, а понякога са коварство и образуват клюн, но винаги са независимо подвижни. В други случаи лабиалните палпи може да не са изправени, но porrect (прожектиране напред хоризонтално). [11] [13] Палпи се състоят от къс базален сегмент, сравнително дълъг централен сегмент и тясна крайна част. Първите два сегмента са плътно мащабирани и могат да бъдат хирсути, а крайният сегмент е гол. Крайният сегмент може да бъде тъп или заострен, той може да излиза право или под ъгъл от втория сегмент, вътре в който може да бъде скрит. [11]

    Устни апарати Редактиране

    Докато челюстите или челюстите (дъвчащи устни апарати) присъстват само в стадия на гъсеницата, устата на повечето възрастни Lepidoptera се състои главно от смучещия вид, тази част е известна като хоботче или haustellum. Няколко вида Lepidoptera имат намален устен апарат и не се хранят в зряло състояние. Други, като базалното семейство Micropterigidae, имат устни апарати за дъвчене. [21]

    Хоботът (множествено число – хоботки) е образуван от максиларни галерии и е приспособен за смучене на нектар. [3] Състои се от две тръбички, държани заедно с кукички и отделящи се за почистване. Всяка тръба е вдлъбната навътре, като по този начин се образува централна тръба, нагоре, от която се изсмуква влагата. Изсмукването се осъществява чрез свиване и разширяване на торбичка в главата. [11] Хоботът се навива под главата, когато насекомото е в покой и се изпъва само при хранене. [16] Максиларните палпи са намалени и дори рудиментирани. Те са забележими и пет сегментирани в някои от по-базалните семейства и често са сгънати. [7]

    Формата и размерите на хоботчето са еволюирали, за да дадат на различните видове по-широка и следователно по-изгодна диета. [3] Съществува алометрична зависимост между телесната маса на Lepidoptera и дължината на хоботката [22], от която интересно адаптивно отклонение е необичайно дългият език сфинкс молец Xanthopan morganii praedicta. Чарлз Дарвин предсказва съществуването и дължината на хоботката на този молец преди откриването му въз основа на познанията си за мадагаскарската звездна орхидея с дълги шпори Angraecum sesquipedale. [23]

    В Lepidoptera има предимно две гилдии за хранене – нектароядните, които получават по-голямата част от хранителните си нужди от флорален нектар, и тези от гилдията на плодоядните, които се хранят предимно със сокове от гниещи плодове или ферментиращ дървесен сок. Има съществени разлики между морфологията на хоботите и на двете гилдии за хранене. Ястребите (семейство Sphingidae) имат удължени хоботчета, които им позволяват да се хранят и да опрашват цветя с дълги тръбовидни венчета. Освен това, редица таксони (особено нощни молци) са развили различни морфологии на хобот. Някои видове ноктуиди са развили пронизващи устни органи, като хоботът има склеротизирани люспи на върха, с които се пробива и смуче кръв или плодови сокове. Хоботци в някои Хеликоний видовете са еволюирали, за да консумират твърди вещества като цветен прашец. [24] Някои други молци, предимно ноктуиди, имат модифицирани хоботи, за да отговарят на техния начин на хранене – лахримофагия (хранене със сълзи на спящи птици). Хоббците често имат остри върхове, както и множество бодли и шпори по стъблото. [25] [26]

    Сканираща електронна микрофотография на хоботчето на молец от семейство Pyralidae

    Сара дългокрила (Хеликоний Сара), един от много Хеликоний видове, за които е известно, че се хранят с цветен прашец, с цветен прашец върху хоботчето

    Xanthopan morganii, африкански сфингид, има хобот с дължина до крак, пригоден за хранене от орхидеята Angraecum sesquipedale

    Lachryphagous Lepidoptera, като двете пеперуди Julia (Dryas iulia), които пият сълзите на костенурките в Еквадор, имат куки и бодли на върха на хоботчето

    Гръдният кош, който се развива от сегменти 2, 3 и 4 на ларвата, се състои от три невидимо разделени сегмента, а именно проторакс, метаторакс и мезоторакс. [11] Органите за движение на насекомите – краката и крилата – се носят върху гръдния кош. Предните крака извират от предгръдния кош, предните крила и средната двойка крака се поемат от мезоторакса, а задните и задните крака произлизат от метаторакса. В някои случаи крилата са рудиментарни. [11] [27]

    Горната и долната част на гръдния кош (съответно terga и sterna) са изградени от сегментни и интрасегментарни склерити, които показват вторична склеротизация и значителна модификация в Lepidoptera. Протораксът е най-простият и най-малкият от трите сегмента, докато мезотораксът е най-развит. [27]

    Между главата и гръдния кош е ципестият врат или маточна шийка. Състои се от двойка странични цервикални склерита и се състои както от главен, така и от гръдни елементи. [10] : 71 [27] Между главата и гръдния кош има кичур, наречен пронотум. От двете страни има щитовидна люспа, наречена лопатка. [11] В Noctuoidea метатораксът е модифициран с двойка тимпанални органи. [7]

    Редактиране на крака

    Предните крака в Papilionoidea показват редукция на различни форми: семейството на пеперудите Nymphalidae, или пеперудите с четкови крака, както обикновено са известни, имат само задните два чифта крака, напълно функционални, като предната двойка е силно намалена и не може да ходи или каца. При Lycaenidae тарзусът е несегментиран, тъй като тарсомерите са слети, а тарзалните нокти липсват. Аролиарната подложка (подложка, стърчаща между тарзалните нокти на някои насекоми) и пулвилите (единствено число: пулвилус, подложка или лоб под всеки тарзален нокът) са намалени или липсват при Papilionidae. Тарзалните нокти също липсват при Riodinidae. [28]

    При Lepidoptera трите чифта крака са покрити с люспи. [13] Lepidoptera също имат обонятелни органи на краката си, които помагат за „вкусване“ или „мирише“ на хранителни растения. [6]

    Wings Edit

    Възрастните Lepidoptera имат две двойки ципести крила, покрити, обикновено изцяло, с малки люспи. Крилото се състои от горна и долна мембрана, които са свързани с малки влакна и подсилени от система от удебелени кухи ребра, популярно, но неправилно наричани "вени", тъй като те могат да съдържат също трахеи, нервни влакна и кръвоносни съдове. [11] [29] Мембраните са покрити с дребни люспи, които имат назъбени краища или косми и са прикрепени с куки. Крилата се движат от бързото мускулно свиване и разширяване на гръдния кош. [11]

    Крилата произлизат от мезо- и метагръдните сегменти и са сходни по размер в базалните групи. В по-производни групи мезогръдните крила са по-големи с по-мощна мускулатура в основата им и по-твърди венозни структури по крайбрежието. [7]

    Освен основната функция на полет, крилата имат и вторични функции на самозащита, камуфлаж и терморегулация. [3] [30] В някои семейства Lepidoptera като Psychidae и Lymantriidae, крилата са намалени или дори липсват (често при женските, но не и при мъжките). [7]

    Редактиране на формата

    Формата на крилата показва голямо разнообразие в Lepidoptera. В случая на Papilionoidea, костата може да бъде права или силно извита. Понякога е вдлъбната на задното крило. От време на време е назъбен или назъбен на предното крило. Върхът може да бъде заоблен, заострен или фалкат (произведен и вдлъбнат отдолу). Терменът има тенденция да бъде прав или вдлъбнат на предното крило, докато обикновено е повече или по-малко изпъкнал на задното крило. Терменът често е назъбен или назъбен, т.е. произведен във всяка вена и вдлъбнат между тях. Гърбът обикновено е прав, но може да е вдлъбнат. [11]

    Задното крило често е опашно, т.е. вените близо до края на торнуса имат една или повече опашки. Самият торнус често се произвежда и често се нарязва. [11] По протежение на задните крила има плътно опаковани люспи в двоен ред. Долната страна на люспите стърчи и образува правилни тесни ресни, наричани реснички. [11]

    Пеперовите молци (семейство Pterophoridae) имат разцепени крила

    При многоперите пеперуди (семейство Alucitidae) крилата са разцепени по протежение на всяка жилка

    Microlepidoptera от Gelechioidea, като напр Palumbina guerinii, имат косоподобни ресни по протежение на задните крила

    Опашат задни крила на мадагаскарски залезен молец (Chrysiridia rhipheus семейство Uraniidae)

    Ликениди, като пъзела на маймуната (Ратинда любов) имат нишковидни опашки, които се опитват да бъдат обяснени с хипотезата за "фалшива глава" [31]

    Хиалинни петна по крилете на колибри ястребов молец, снежно гроздово крило (Hemaris diffinis)

    Pachyerannis obliquaria, чифтосване – крилат мъжки отгоре, малка безкрила женска отдолу

    Venation Edit

    През двуслойното ципесто крило преминават тръбни вени. Вените са свързани с хемоцела и на теория позволяват на хемолимфата да тече през тях. Освен това през вените могат да преминат нерв и трахея. [29]

    Жилкирането на лепидоптерите е просто с това, че има малко напречни греди. [15] : 88 Жилкирането на крилата при Lepidoptera е диагностично средство за разграничаване между таксоните, както и родовете и семействата. [13] Терминологията се основава на системата Comstock-Needham, която дава морфологичното описание на жилкирането на крилата на насекомите. [32] При базалните Lepidoptera жилка на предните крила е подобна на тази на задното крило, състояние, наричано "хомоневро". Micropterigidae (Zeugloptera) имат жилка, която наподобява най-примитивните кадиси (Trichoptera). Всички останали Lepidoptera, огромното мнозинство (около 98%), са "хетероневрални", като жилка на задното крило се различава от това на предното крило и понякога е намалена. Молците от семейства Nepticulidae, Opostegidae, Gracillariidae, Tischeriidae и Bucculatricidae, наред с други, често имат силно намалено жилкиране и в двете крила. [13] : 635 [32] : 56 Еднородните нощни молци са склонни да имат формата „jugum” на съединяване на крилата, за разлика от подредбата „frenulum-retinaculum” в случай на по-напреднали семейства.

    Жилкиране на крилата на насекоми, показващо имената след системата Comstock-Needham

    Съединител на крилото Редактиране

    Lepidoptera са развили голямо разнообразие от морфологични механизми за свързване на крилата в имагото, които правят тези таксони „функционално двукрили“ (двукрили). [33] Всички с изключение на най-основните форми показват това съединяване на крилата. [34] Има три различни типа механизми – югал, френуло-ретинакуларен и амплексиформен. [35]

    По-примитивните групи имат уголемена зона, подобна на лоб, близо до задния базален ръб (т.е. в основата на предното крило), наречена jugum, който се сгъва под задното крило по време на полет. [7] [34] Други групи имат френулум на задното крило, който се закача под ретинакулум на предното крило. [7]

    При всички пеперуди (с изключение на мъжките Euschemoninae) и при пеперудите Bombycoidea (с изключение на Sphingidae) няма подреждане на френулум и ретинакулум за свързване на крилата. Вместо това, уголемена раменна област на задното крило е широко припокривана от предното крило. Въпреки липсата на специфична механична връзка, крилата се припокриват и работят във фаза. Мощният ход на предното крило изтласква задното крило в унисон. Този тип свързване е вариация на типа френат, но където френулумът и ретинакулумът са напълно загубени. [33] [36]

    Крилата на Lepidoptera са дребно люспести, което дава името на този разред името Lepidoptera е измислен през 1735 г. от Карл Линей за групата "насекоми с четири люспести крила". Произлиза от старогръцки език лепис (λεπίς), което означава „(рибена) люспа“ (и свързано с лепеин „да беля“) и птерон (πτερόν), което означава „крило“. [37]

    Люспите също покриват главата, части от гръдния кош и корема, както и части от гениталиите. Морфологията на люспите е изследвана от J. C. Downey и A. C. Allyn (1975) [38] и люспите са класифицирани в три групи, а именно косоподобни или пилиформен, подобен на острие, или ламелни и други променливи форми. [8]

    Примитивните молци (не-Glossata и Eriocranidae) имат "твърди" люспи, които са неперфорирани, т.е. им липсва лумен. [8]

    Няколко таксона от Trichoptera (caddisflies), които са сестринската група на Lepidoptera, имат подобни на косми люспи, но винаги на крилата и никога върху тялото или други части на насекомото. [13] Кадисите също притежават опашни церци на корема, характеристика, която липсва при Lepidoptera. [7] Според Scoble (2005), [8] „морфологично люспите са макротрихии и по този начин са хомоложни с големите косми (и люспи), които покриват крилата на Trichoptera (caddisflies)“.

    Редактиране на структурата

    Въпреки че има голямо разнообразие във формата на мащаба, всички те споделят сходна структура. Люспите, подобно на други макрохети, произлизат от специални трихогенни (произвеждащи коса) клетки и имат гнездо, което е затворено в специална „тормогенна“ клетка [15] : 9 тази подредба осигурява дръжка или дръжка чрез които люспите се закрепват към субстрата. Люспите могат да бъдат пилиформни (подобни на косми) или сплескани. Тялото или "острие" на типична сплескана люспа се състои от горна и долна ламела с въздушно пространство между тях. Повърхността към тялото е гладка и известна като по-нисък ламела. Горната повърхност, или превъзхождащ ламела, има напречни и надлъжни ръбове и ребра. Ламелите се държат отделно от подпори, наречени trabaculae и съдържат пигменти, които дават цвят. Люспите се придържат малко свободно към крилото и лесно се отделят, без да навредят на пеперудата. [8] [13] [39]

    Редактиране на цвят

    Люспите на крилата на пеперудата са пигментирани с меланини, които могат да произвеждат черни и кафяви цветове. Белият цвят в семейство пеперуди Pieridae е производно на пикочната киселина, продукт на отделяне. [13] [40] : 84 Ярко синьо, зелено, червено и ирисценция обикновено се създават не от пигменти, а чрез микроструктурата на люспите. Това структурно оцветяване е резултат от кохерентно разсейване на светлината от природата на фотонните кристали на люспите. [41] [42] [43] Специализираните люспи, които осигуряват структурни цветове на отразената светлина, произвеждат предимно ултравиолетови модели, които се забелязват в тази част от ултравиолетовия спектър, която очите на лепидоптера могат да видят. [13] Вижданият структурен цвят често зависи от зрителния ъгъл. Например, в Morpho cypris, цветът отпред е ярко син, но когато се гледа от ъгъл, се променя много бързо в черен. [44]

    Ирисцентното структурно оцветяване на крилата на много видове ликениди и папилиониди, като напр. Parides sesostris и Teinopalpus Imperialis, и ликениди като напр Калофрис руби, Cyanophrys remus, и Mitoura gryneus, е проучено. [45] Те проявяват най-сложните известни фотонни мащабни архитектури – правилни триизмерни периодични решетки, които се срещат в лумена на някои скали. [46] В случая с Kaiser-i-Hind (Teinopalpus Imperialis), триизмерната фотонна структура е изследвана чрез трансмисионна електронна томография и компютърно моделиране, за да се разкрият естествено срещащи се „хирални тетраедрични повтарящи се единици, опаковани в триклинна решетка“, [47] [48] причината за ирисценцията.

    Структурен син цвят в morpho cypris, нимфалида

    Когато същото Morpho cypris екземплярът се вижда отгоре, синият цвят става черен.

    Белият цвят в пиеридите, като напр Delias eucharis е производно на пикочната киселина, продукт на отделяне.

    Зелената ирисценция на лястовичката опашка Kaiser-i-Hind (Teinopalpus Imperialis) доведе до откриването на триизмерна фотонна кристална структура.

    Оцветяването на крилата при някои Lepidoptera позволява камуфлаж, както може да се види в случая на геометридния молец Colostigia aqueata.

    Редактиране на функция

    Люспите играят важна роля в естествената история на Lepidoptera. Везните позволяват развитието на ярки или неясни модели, които помагат на организма да се защити чрез камуфлаж, мимикрия и предупреждение.Освен че осигуряват изолация, тъмните шарки на крилата позволяват да се абсорбира слънчевата светлина и вероятно участват в терморегулацията. Ярките и отличителни цветови модели на пеперудите, които са неприятни за хищниците, помагат да се съобщи за тяхната токсичност или неядливост, като по този начин предотвратява хищничеството. В мимикрията на Бейтс, моделите на цветовете на крилата помагат на ядливите лепидоптери да имитират негодни за консумация модели, докато в мимикрията на Мюлер неядливите пеперуди си приличат, за да намалят броя на индивидите, взети от неопитни хищници. [8]

    Везните може да са се развили първоначално за осигуряване на изолация. Люспите по гръдния кош и други части на тялото могат да допринесат за поддържане на високите телесни температури, необходими по време на полет. „Твърдите“ люспи на базалните молци обаче не са толкова ефективни, колкото тези на техните по-напреднали роднини, тъй като наличието на лумен добавя въздушни слоеве и повишава изолационната стойност. [8] Везните също помагат да се увеличи съотношението на повдигане към съпротивление по време на полет. [8]

    За новопоявилите се възрастни от повечето мирмекофилни Lycaenidae широколистните восъчни люспи осигуряват известна защита от хищници, когато излизат от гнездото. [8] В случай на пеперудата молец (Liphyra brasolis), гъсениците са нежелани гости в гнезда на дървесни мравки, хранещи се с ларви на мравки. Възрастните, излизащи от какавидите, са покрити с меки, хлабави лепкави люспи, които се трият и залепват по мравките, докато си проправят път от гнездото след излюпването. [49]

    Андрокония Edit

    Мъжките Lepidoptera притежават специални люспи, наречени андрокония (единствено число – андроконий), които са се развили в резултат на сексуален подбор за целите на разпространение на феромони за привличане на подходящи партньори. Андрокония може да бъде разпръсната по крилата, тялото или краката или да се появи на петна, наричани "марки", "полови марки" или "стигмати" по крилата, обикновено в инвагинации на горната повърхност на предните крила, понякога прикрити от други везни. Известно е също, че androconia се среща в гънките на крилата. Тези марки понякога се състоят от подобни на косми кичури, които улесняват дифузията на феромона. Ролята на андрокония в ухажването на пеперуди пиерид и нимфалида, като напр. Pyronia tithonus и Дряс Юлия, е доказано експериментално. [15] : 16–17 [50] [51] [52] [53]

    Последователни близки планове на люспите на крило на паун

    Фотографски и светлинни микроскопични изображения
    Изглед с намален мащаб на Aglais io. Крупен план на люспите на същия екземпляр. Голямо увеличение на цветните люспи (вероятно различен вид).
    Електронно-микроскопски изображения
    Парче от крило Везни отблизо Единична скала Микроструктура на скала
    Увеличение Прибл. ×50 Прибл. ×200 ×1000 ×5000

    Коремът или тялото се състои от девет сегмента. При ларвата той варира от сегменти 5 до 13. Единадесетият сегмент на ларвата притежава чифт анални закопчалки, които стърчат в някои таксони и представляват гениталиите. [11]

    Много семейства от молци имат специални органи, които помагат да се открие ехолокацията на прилепите. Тези органи са известни като тимпана (единствено число – typanum). Pyraloidea и почти всички Geometroidea имат тимпана, разположена на предния стернит на корема. Noctuoidea също имат тимпана, но в техния случай тимпаната се намира от долната страна на метаторакса, чиято структура и положение са уникални и са таксономична отличителна черта на суперсемейството. [21] [54]

    Женските на някои молци имат орган, излъчващ аромат, разположен на върха на корема. [6]

    Редактиране на гениталии

    Гениталиите са сложни и осигуряват основата за видова дискриминация в повечето семейства, както и за идентификация на семейството. [7] Гениталиите произлизат от десетия или най-дисталния сегмент на корема. Lepidoptera имат едни от най-сложните генитални структури на всички насекоми, с голямо разнообразие от сложни шипове, четинки, люспи и кичури при мъжките, закопчалки с различни форми и модификации на ductus bursae при жени, чрез които съхраняваната сперма се прехвърля в жената директно или индиректно във влагалището за оплождане. [13] [55] [56]

    Подреждането на гениталиите е важно при ухажването и чифтосването, тъй като те предотвратяват кръстосано специфично чифтосване и хибридизация. Уникалността на гениталиите на вида доведе до използването на морфологичното изследване на гениталиите като един от най-важните ключове в таксономичната идентификация на таксони под семейно ниво. С появата на ДНК анализа, изследването на гениталиите вече се превърна в само една от техниките, използвани в таксономията. [6]

    Има три основни конфигурации на гениталиите в по-голямата част от Lepidoptera въз основа на това как се е развило разположението на отворите за копулация, оплождане и снасяне на яйца при женските:

    • Екзопорски: Hepialidae и сродните им семейства имат външен жлеб, който пренася сперматозоидите от копулационния отвор (гонопора) до (випора) и се наричат ​​​​екзопори. [7]
    • монотризиански: Примитивните групи имат единичен генитален отвор близо до края на корема, през който се извършва както копулацията, така и снасянето на яйца. Този знак се използва за обозначаване на Monotrysia. [7]
    • Дитрисиан: Останалите групи имат вътрешен канал, който пренася сперма и образува дитризия, с отделни отвори за копулация и снасяне на яйца. [7]

    Гениталиите на мъжкия и женския при всеки конкретен вид са пригодени да пасват един на друг като ключалка (мъжки) и ключ (женски). [6] При мъжете деветият коремен сегмент е разделен на дорзален „тегумен“ и вентрален „виникулум“. [56] Те образуват пръстеновидна структура за закрепване на генитални части и двойка странични закопчаващи органи (закопчалки или „харфа“). Мъжкият има среден тръбест орган (наречен едеагус), който е удължен през обръщаща се обвивка (или „vesica“), за да осеменява женската. [55] Мъжките имат сдвоени сперматозоиди при всички лепидоптери, чифтните тестиси са отделни в базални таксони и слети в напреднали форми. [55]

    Докато разположението на вътрешните генитални канали и отворите на женските гениталии зависи от таксономичната група, към която принадлежи насекомото, вътрешната женска репродуктивна система на всички лепидоптери се състои от сдвоени яйчници и допълнителни жлези, които произвеждат жълтъците и черупките на яйцата. Женските насекоми имат система от съдове и канали, в които се получава, транспортира и съхранява сперма. Яйцепроводите на женската се съединяват, за да образуват общ канал (наречен "oviductus communis"), който води до влагалището. [55] [56]

    Когато се извърши копулация, мъжката пеперуда или молец поставя капсула със сперматозоиди (сперматофор) в съд на женската (наречен corpus bursae). Спермата, когато се освободи от капсулата, плува директно в или през малка тръба в специален семенен съд (spermatheca), където спермата се съхранява, докато не бъде освободена във влагалището за оплождане по време на снасяне на яйца, което може да се случи часове, дни или месеци след чифтосване. Яйцата преминават през яйцеклетката. Яйцеклетката може да бъде в края на модифициран яйцеклад или заобиколена от двойка широки сетозни анални папили. [55] [56]

    Пеперудите от Parnassinae (семейство Papilionidae) и някои Acraeini (семейство Nymphalidae) добавят следкопулационна запушалка, наречена sfragis, към корема на женската след копулация, предотвратявайки нейното повторно чифтосване. [13]

    Мъжките от много видове Papilionoidea са снабдени с вторични полови белези. Те се състоят от ароматизиращи органи, четки и марки или торбички със специализирани люспи. Те вероятно отговарят на функцията да убедят женската, че се чифтосва с мъжки от правилния вид. [11]

    Три вида ястреби са регистрирани да излъчват ултразвукови щракания чрез триене на гениталиите си, които мъжките произвеждат чрез триене на твърди люспи по външната страна на закопчалки докато женските произвеждат звук чрез свиване на гениталиите си, което причинява триене на люспи в корема. Функцията на този шум не е ясна и предложенията включват заглушаване на ехолокацията на прилепа и рекламиране, че плячката на прилепа са бодливи и отлични летци. [57]

    Citheronia regalis със затворени закопчалки

    Женски Аполон със сфрагис или чифтосване

    Близък план на втвърдения сфрагис, екструдиран на 2 до 3 mm зад корема на Парнасий

    Cloaca Edit

    Lepidopteran насекоми имат клоака в края на корема. Това може да бъде пълно, включващо ануса, яйцеклетката и копулаторната пора, както в случая на Dacnonypha, Zeugloptera и по-голямата част от Monotrysia или непълно, включващо само ануса и яйцеклетката, както се намира в някои от Monotrysia, Psychidae, а при някои Choreutidae и Cossidae. [58]

    Оплоденото яйце узрява и се излюпва, за да даде гъсеница. Гъсеницата е етапът на хранене от жизнения цикъл на честокрилите. Гъсеницата трябва да може да се храни и да избягва да бъде изядена и голяма част от нейната морфология се е развила, за да улесни тези две функции. [59] : 108 След растеж и екдиза, гъсеницата влиза в стадий на развитие, наречен какавида (или хризалис), около който може да образува обвивка. Насекомото се развива във възрастен в стадия на какавида, когато е готово, какавидата се излюпва и възниква възрастен стадий или имаго на пеперуда или молец.

    Редактиране на яйца

    Подобно на повечето насекоми, Lepidoptera са яйценосни или "яйчни слоеве". [40] Яйцата на чешуекрылите, подобно на тези на други насекоми, са центролецитални, тъй като яйцата имат централен жълтък, заобиколен от цитоплазма. Жълтъкът осигурява течна храна за гъсеницата на ембриона, докато тя избяга от черупката. [60] Цитоплазмата е обградена от вителинова обвивка и протеинова мембрана, наречена хорион, защитава яйцеклетката отвън. [60] [61] Ядрото на зиготата е разположено отзад. [61]

    При някои видове Lepidoptera има восъчен слой вътре в хориона, съседен на вителинния слой, за който се смята, че се е развил, за да предотврати изсъхването. При насекомите хорионът има слой от въздушни пори в иначе твърдия материал, което осигурява много ограничена способност за дихателна функция. При Lepidoptera, хорионният слой над този слой от въздушни пори е ламелен с последователни листове протеин, подредени в определена посока и стъпаловидни, така че да образуват спирално подреждане. [61]

    Горната част на яйцето е вдлъбната и образува малка централна кухина, наречена микропиле, през която яйцето се опложда. [11] Микропилът е разположен отгоре в яйцата, които са кълбовидни, конични или цилиндрични, в тези яйца, които са сплескани или лещовидни, микропилът е разположен на външния ръб или ръба. [18] [62]

    Яйцата на Lepidoptera обикновено са заоблени и малки (1 mm), въпреки че могат да бъдат големи до 4 mm в случая на Sphingidae и Saturniidae. [13] : 640 Те обикновено са доста обикновени на цвят, бели, бледозелени, синкавозелени или кафяви. Яйцата на пеперуди и молци се предлагат в различни форми, някои са сферични, други полусферични, конични, цилиндрични или лещовидни (с форма на леща). Някои са с форма на бъчва или с форма на палачинка, докато други са с форма на тюрбан или сирене. Те могат да бъдат под ъгъл или вдлъбнати в двата си края, ръбести или орнаментирани, на петна или петна. [18] [62]

    Яйцата се отлагат поединично, на малки клъстери или в маса и неизменно върху или близо до източника на храна. Известно е, че молците в плен снасят яйца в клетките, в които са били изолирани. [18] [62] Размерът на яйцата при Lepidoptera се влияе от редица фактори. Видовете Lepidoptera, които презимуват в стадия на яйцата, обикновено имат по-големи яйца от видовете, които не го правят. По същия начин видовете, хранещи се с дървесни растения в стадий на ларва, имат по-големи яйца от тези видове, хранещи се с тревисти растения. Забелязано е, че яйцата, снесени от по-възрастни женски от няколко вида пеперуди, са по-малки по размер от по-младите им събратя. При липса на адекватно хранене, женските на царевичния молец ( Остриния spp.) са регистрирани да снасят гнездове с размери на яйцата под нормалните. [61]

    Докато бягат, новоизлюпените ларви на много видове понякога изяждат хориона, за да излязат. Като алтернатива, черупката на яйцето може да има линия на слабост около капачката, която отстъпва, позволявайки на ларвата да се появи. [61] Черупката на яйцето и малко количество жълтък, уловени в амниотичните мембрани, образуват първата храна за повечето ларви на лепидоптери.

    Яйца на пионер (Anaphaeis aurota семейство Pieridae)

    Яйца от пурпурна роза (Атрофаневра хектор семейство Papilionidae)

    Яйце от слез скипер (Carcharodus alceae семейство Hesperiidae)

    Яйце от едро мед (Lycaena dispar семейство Lycaenidae)

    Едно до друго яйца от дитризиански лепидоптер, плешива кипариса (Архипс гойерена семейство Tortricidae)

    Изправени яйца от дитризиански лепидоптер, лунен молец (Actias luna семейство Saturniidae) положени в плен на хартия

    Яйца от боров молец (Bupalus piniaria семейство Geometridae)

    Яйца от лакейски молец (Малакозомна неустрия семейство Lasiocampidae)

    Редактиране на Caterpillar

    Гъсениците са „характерни полиподни ларви с цилиндрични тела, къси гръдни крака и коремни предни крака (псевдоподи)“. [63] Те имат закалена (склеротизирана) капсула на главата, долни челюсти (устни апарати) за дъвчене и меко тръбесто, сегментирано тяло, което може да има косоподобни или други издатини, три чифта истински крака и допълнителни крака (до пет чифта). [2] Тялото се състои от тринадесет сегмента, от които три са гръдни (T1, T2 и T3) и десет са коремни (A1 до A10). [21]

    Всички истински гъсеници имат обърната надолу Y-образна линия, която минава от върха на главата надолу. Между Y-образната линия лежи предният триъгълник или предните части. Клипеусът, разположен под челата, лежи между двете антени. Лабрумът се намира под клипеуса. В центъра на лабрума има малък прорез, с който ръбът на листа се захваща, когато гъсеницата яде. [64]

    Ларвите имат копринени жлези, които са разположени на срамните устни. Тези жлези са модифицирани слюнчени жлези. Те използват тези копринени жлези, за да направят коприна за пашкули и убежища. [21] Под лабрума са разположени мандибулите. [64] От всяка страна на главата обикновено има шест стебли точно над долните челюсти. Тези стебли са подредени в полукръг. Под стъблата има малка двойка антени, по една от всяка страна. [21] [64]

    Гръдният кош носи три чифта крака, по един чифт на всеки сегмент. Протораксът (T1) има функционален дихател, който всъщност произлиза от мезоторакса (T2), докато метатораксът има намалено дихало, което не е отворено външно и лежи под кутикулата. [59] : 114 Гръдните крака се състоят от кокса, трохантер, бедрена кост, тарзус и нокът и са с постоянна форма в целия ред. Те обаче са намалени в случай на някои листоминери и удължени при някои Notodontidae. При Micropterigidae краката са трисегментни, като коксата, трохантерът и бедрената кост са слети. [59] : 114

    Коремните сегменти от три до шест и десет могат да носят по чифт крака, които са по-месести. [21] Гръдните крака са известни като истински крака, а коремните крака се наричат ​​пролега. [64] Истинските крака варират малко при Lepidoptera, с изключение на намаляването на някои листоминери и удължаването в семейство Notodontidae. [59] : 114 Краката съдържат множество малки кукички на върха, които са известни като плетене на една кука. Семействата на Lepidoptera се различават по броя и разположението на крайниците си. Някои ларви като inchworms (Geometridae) и loopers (Plusiinae) имат пет чифта прокрака или по-малко, докато други като Lycaenidae и гъсеници на охлюв (Limacodidae) нямат прокрака като цяло. [21] [64] При някои листодобивни гъсеници има плетене на една кука, присъстващи на коремната стена, които са намалени крака, докато други видове, добиващи листа, нямат плетене на една кука изцяло. [65] Коремните дихалци са разположени от всяка страна на тялото на първите осем коремни сегмента. [64]

    Гъсениците имат различни видове издатини сети (косми), шипове, брадавици, туберкули и рога. Космите се предлагат в асортимент от цветове и могат да бъдат дълги или къси единични, на кичури или на кичури, по-тънки на върха или с шипове в края. Гръбначният стълб може да бъде или a chalaza (с една точка) или a сколус (с множество точки). Брадавиците могат да бъдат или малки подутини, или къси издатини по тялото. Туберкулите са месести издатини на тялото, които са или къси и подобни на издатини, или дълги и подобни на нишки. Обикновено се срещат по двойки или в клъстер на един или повече сегменти. Рогата са къси, месести и изтеглени на върха. Обикновено се намират в осмия коремен сегмент. [65]

    Голям брой видове от семейства Saturniidae, Limacodidae и Megalopygidae имат жилещи гъсеници, които имат отровни сети, наречени уртикиращи власинки, а в случай на Лономия – бразилски сатурниид – може да убие човек поради мощната си антикоагулантна отрова. [13] : 644 гъсеници от много таксони, които са отделили токсични химикали от растенията гостоприемници или имат остри уртикиращи косми или шипове, показват апосематично оцветяване и белези. [66]

    Гъсениците претърпяват екдизис и имат редица ларвни стадии, обикновено пет, но вариращи между видовете. Новата кутикула е мека и позволява увеличаването на размера и развитието на гъсеницата, преди да стане твърда и нееластична. При последната екдиза старата кутикула се разделя и се извива на малка топка в задния край на какавидата и е известна като ларва ексувия. [67] : 31

    Два етапа на папилионида обикновен мормон с различни камуфлажни схеми – наподобяващи птичи изпражнения и растителност


    Описание на книгата

    Многобройни и харизматични, Lepidoptera са една от най-широко изследваните групи безгръбначни. Напредъкът в молекулярните инструменти и геномните техники намали нуждата от големи размери и масово отглеждане, а системите с модел на лепидоптери се използват все по-често за осветяване на широкообхватни експериментални въпроси, както и тези, характерни за пеперудите и молците. Молекулярната биология и генетика на лепидоптерите представя широка колекция от изследвания върху лепидоптерите, третирайки ги като специализирани насекоми с отличителни черти и като моделни системи за извършване на авангардни изследвания. Водещи изследователи предоставят еволюционна рамка за поставяне на молци и пеперуди върху Дървото на живота.

    Книгата обхваща напредъка в дешифрирането на генома на копринената буба и разкриването на полови хромозоми на лепидоптери. Той съдържа нова информация за определянето на пола, еволюцията и развитието на моделите на крилата на пеперудата, очите, зрението, циркадните часовници, хеморецепторите и сексуалната комуникация. Участниците обсъждат генетиката и молекулярната биология на обхвата на растителни гостоприемници и перспективите за контрол на основния род вредители по културите Helicoverpa. Те също така изследват повишаването на резистентността към инсектициди, вродения имунен отговор, лепидоптерните минихости за тестване на човешки патогени и антибиотици и използването на интрахемоцелни токсини за контрол. Книгата завършва с отразяване на паразитоидни оси, пренасящи полиДНК вирус, и клонирането на първия ген за устойчивост на вируси в копринената буба.

    Разбирането на биологията и генетиката на пеперудите и молците може да доведе до нови видове селективни методи за контрол, спестявайки милиарди долари от употребата на пестициди и опазването на околната среда и човешкото здраве, което прави разделите за стратегиите за управление на вредителите изключително важни. Тази книга ще отвори нови пътища към изследователската литература за широка аудитория, включително ентомолози, еволюционни и систематични биолози, генетици, физиолози, биохимици и молекулярни биолози.


    Биология – колекция и идентификация на насекоми в гимназията – Библиографии по биология – в харвардски стил

    Вашата библиография: Anic.ento.csiro.au 2015 г. Хименоптери | Какъв бъг е това?. [онлайн] Наличен на: <http://anic.ento.csiro.au/insectfamilies/biota_details.aspx?OrderID=27447&BiotaID=29800&PageID=families> [Достъп на 29 март 2015 г.].

    Ихневмонидни оси - Австралийски музей

    В текст: (Ихневмонидни оси - Австралийски музей, 2014)

    Вашата библиография: Australianmuseum.net.au. 2014 г. Ихневмонидни оси - Австралийски музей. [онлайн] Достъпно на: <http://australianmuseum.net.au/ichneumonid-wasps> [Посетен на 29 март 2015 г.].

    Бризбейн насекоми и паяци

    Резюме на живота на бъг - в пълна метаморфоза

    В текст: (Насекоми и паяци в Бризбейн, 2006 г.)

    Вашата библиография: Бризбейн насекоми и паяци, 2006 г. Резюме на живота на бъг - в пълна метаморфоза. [изображение] Достъпно на: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_insects/Buglife.htm> [Достъп на 28 март 2015 г.].

    Скакалци - семейство ACRIDIDAE

    В текст: (Скакалци - Семейство ACRIDIDAE, 2011)

    Вашата библиография: Brisbaneinsects.com. 2011 г. Скакалци - Семейство ACRIDIDAE. [онлайн] Достъпно на: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_grasshoppers/Acrididae.htm> [Достъп на 28 март 2015 г.].

    Чу, П.

    Животът на бъгове

    В текст: (Дъвче, 2006)

    Вашата библиография: Чу, П., 2006. Животът на бъг. [онлайн] Brisbaneinsects.com. Достъпно на: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_insects/Buglife.htm> [Достъп на 28 март 2015 г.].

    Чу, П.

    Семейство Ichneumonidae - Ichneumon Wasps

    В текст: (Дъвче, 2013)

    Вашата библиография: Чу, П., 2013 г. Семейство Ichneumonidae - Ichneumon Wasps. [онлайн] Brisbaneinsects.com. Достъпно на: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_ichneumonwasps/ICHNEUMONIDAE.htm> [Достъп на 29 март 2015 г.].

    Паразитоиди на ларвите на лепидоптери

    В текст: (Паразитоиди на ларвите на Lepidopteran, 2012)

    Вашата библиография: Cottoncrc.org.au. 2012 г. Паразитоиди на ларвите на лепидоптери. [онлайн] Достъпно на: <http://www.cottoncrc.org.au/industry/Publications/Pests_and_Beneficials/Cotton_Insect_Pest_and_Beneficial_Guide/Beneficials_by_common_name/Parasitoids_of_Lepidopteed2 [01/2012]

    Жизненият цикъл на пеперудата

    В текст: (Жизненият цикъл на пеперудата, 2015 г.)

    Вашата библиография: Drexel University - Академия за естествени науки на Drexel University, Природонаучният музей във Филаделфия. 2015 г. Жизненият цикъл на пеперудата. [онлайн] Достъпно на: <http://www.ansp.org/explore/online-exhibits/butterflies/lifecycle/> [Достъп на 29 март 2015 г.].

    Семейство Acrididae

    В текст: (Семейство Acrididae, 2015 г.)

    Вашата библиография: Ento.csiro.au 2015 г. Семейство Acrididae. [онлайн] Достъпно на: <http://www.ento.csiro.au/education/insects/orthoptera_families/acrididae.html> [Достъп на 28 март 2015 г.].

    Мантодея - богомолки

    В текст: (Mantodea - богомолки, n.d.)

    Вашата библиография: Ento.csiro.au н.д. Мантодея - богомолки. [онлайн] Достъпно на: <http://www.ento.csiro.au/education/insects/mantodea.html> [Достъп на 30 март 2015 г.].

    Eurema hecabe

    В текст: (Eurema hecabe, 2015)

    Вашата библиография: Lepidoptera.butterflyhouse.com.au. 2015 г. Eurema hecabe. [онлайн] Наличен на: <http://lepidoptera.butterflyhouse.com.au/pier/hecabe.html> [Достъп на 29 март 2015 г.].

    UF/IFAS Okeechobee Extension Service | Дуранта / Златна роса

    В текст: (UF/IFAS Okeechobee Extension Service | Duranta / Golden Dewdrop, 2012)


    Молекулярна еволюция на гените на одорантите и вкусовите рецептори в лепидоптерните насекоми: последици за тяхната адаптация и спецификация

    Lepidoptera (състоящ се от пеперуди и молци) е една от най-големите групи насекоми, включваща повече от 160 000 описани вида. Хеморецепцията играе важна роля в адаптирането на тези видове към широк спектър от ниши, например растителни гостоприемници, места за снасяне на яйца и партньори. Това проучване изследва молекулярната еволюция на одоранта на лепидоптера (Или) и вкусови рецептори (гр) гени, използващи наскоро идентифицирани гени от Bombyx mori, Данаус плексип, Хеликоний мелпомена, Plutella xylostella, Heliothis virescens, Manduca sexta, Cydia pomonella, и Spodoptera littoralis. Наблюдават се ограничен брой случаи на голяма генна експанзия, специфична за линията (с изключение на P. xylostella линия), вероятно поради селекция срещу тандемно генно дублиране. Има силна пречистваща селекция по време на еволюцията както на гените за аромат на лепидоптера, така и на вкусовите гени, както се вижда от ниските ω стойности, изчислени чрез анализ на CodeML, вариращи от 0,0093 до 0,3926. Въпреки това, пречистващата селекция е отпусната на някои аминокиселинни места в тези рецептори, което води до дивергенция на последователностите, което е предшественик на положителна селекция на тези последователности. Сигнатури на положителна селекция бяха открити само в няколко локуса от специфичния за линията анализ. Оценката на печалбите и загубите на гени предполага, че общият прародител на Lepidoptera е имал по-малко Или гени в сравнение със съществуващите видове и още по-намален брой на гр гени, особено в кладата на горчивия рецептор. По време на еволюцията на Lepidoptera са настъпили множество генни печалби и няколко загуби на гени. Разширяването на семейството на гените може да бъде свързано с адаптирането на видовете лепидоптери към растителни гостоприемници, особено след облъчване на покритосеменни растения. Филогенетичният анализ на гените на рецептора за полови феромони на молци предполага, че хромозомни транслокации са се случвали няколко пъти. Нови рецептори за полови феромони са възникнали чрез тандемно генно дублиране. Положителна селекция беше открита в някои аминокиселинни места, за които се прогнозира, че са в извънклетъчните и трансмембранни области на новодуплираните гени, което може да бъде свързано с еволюцията на новите феромонни рецептори.

    Това е визуализация на абонаментно съдържание, достъп през вашата институция.


    Методи

    Изолиране и идентифициране на натив B. thuringiensis щамове

    Вземането на проби от почвата е извършено в шест различни региона в провинция Ал-Ахса в източния регион на Саудитска Арабия. Четири проби са от култивирана почва (Al-Buhairia, Al-Batalieh, Ghubaiba Villages) и две от некултивирана почва (планините El-Qaarh и El-Shoabah). Горният слой на почвата беше отстранен, за да се избегне разрушителният ефект на атмосферната UV радиация върху жизнеспособността на Bt спори. Пробите се поставят в торби с цип и се съхраняват в хладилник при 4 °C до изолиране (Palma 2015). Почвените проби се суспендират във физиологичен разтвор 0,85% (1 g почва/солен разтвор) всички проби се разклащат при 250 rpm в продължение на 1 час. Всички почвени проби бяха изложени на 75 ° C за 20 минути, за да се убият повечето от не-спорообразуващите клетки. Около 0,2 ml от всяка почвена суспензия се посяват върху хранителна агарна (NA) среда и времето за инкубация е 24 часа при 30 °C (Daniel et al. 2018). Излагане на бактериални колонии Bt като фенотип плосък, матово бял цвят, сухи и неравни граници бяха внимателно подбрани и субкултивирани върху хранителна агарова среда за изолиране на единична колония (Palma 2015). Избраните колонии се отглеждат върху Т3 агарова среда (на литър: 3 g триптон, 2 g триптоза, 1,5 g екстракт от дрожди, 0,05 M натриев фосфат [pH 6,8] и 0,005 g MnCl (Travers et al. 1987)) и се инкубират при . 30 °С за 72 часа. Клетките на Bt потенциалните изолати, отгледани върху Т3 агарна среда, се оцветяват с оцветяване по Грам, както и с реагенти за оцветяване на спори. всичко Bt щамове бяха изследвани за наличие на вегетативни клетки, спори и параспорално включване (Padole et al. 2017). Bt изолати бяха допълнително характеризирани чрез изследване на ензимната активност за каталаза, уреаза, казеиназа, желатиназа, амилаза и лецитиназа съгласно Cinar et al. (2008 г.). всичко Bt щамовете са получили кодови имена за разпознаване.

    Подготовка и улавяне на инсектицидни кристални протеини (ICPs)

    Клетките на Bt потенциалните изолати се отглеждат върху Т3 среда при 30 °С и 200 rpm в продължение на 7 дни за индукция на спори. Суспензия на спори на Bt изолатът се центрофугира при 15 000 rpm и 4 ° С в продължение на 10 минути за събиране на смеси от спори и кристали. Чистите спорови кристали бяха фиксирани и покрити чрез разпръскване с 10 nm Au/Pd с помощта на параспорален кристален протеин SC7620 Mini-sputter coverer, бяха изследвани и уловени с помощта на сканиращ електронен микроскоп LEO440 при 20 kV лъч (фиг. 1) (Yilmaz et al. 201 ).

    Сканираща електронна микроскопия (SEM) Bt щамове Bt1, Bt9, Bt10 и Bt11, показващи образуване на спори (S) и ендокристали (C), са типични характерни черти за Bt клетки

    Анализ на инсектицидни кристални протеини (ICPs)

    Протеините от параспорален кристал бяха разтворени, характеризирани и достъпни с помощта на 10% SDS-PAGE съгласно Laemmli (1970) с незначителна модификация, както следва: Аликвоти от LB култура за една нощ от Bt щамове и Bt-HD1 референтен щам бяха инжектирани в течна Т3 среда (Bozlagan et al. 2010) при 30 °C за повече от 3 дни. Десет милилитра от Bt бульонът се събира чрез центрофугиране при 7500 rpm за 20 минути, 4 °С. След това гранулираните протеинови кристали се суспендират в 3 ml стерилизирана дестилирана вода (SDW) при 4 °С. Пелетираните протеини се промиват два пъти от SDW при същите условия по-късно, гранулираните кристални протеини се разтварят в 100 μl стерилна дестилирана вода и 100 μl 2X разрушаващ буфер, съставен от 125 mM Tris-HCl, pH 6.8, натриев додецил сулфат ( SDS) 4%, β-меркаптофенол 0,2%, глицерол 50%, бромофенол синьо 0,02%. В Bt пелетата се смесва добре, кипва в продължение на 10 минути и се оставя да се охлади за 1 минута, накрая се центрофугира за 15 минути при 10 000 rpm и се зарежда върху страница с 12% SDS полиакриламиден гел.

    Сканиране на B. thuringiensis щамове за плача изолиране на гени от ДНК

    Тестовете бяха проведени, както следва: 15 μl от Bt чиста единична колония беше избрана от култура с хранителен агар и суспендирана в 150 μl SDW, суспензията беше подложена на кипене в продължение на 5 минути, последвано от охлаждане при стайна температура и центрофугирана при 10 000 rpm при 4 ° C в продължение на 10 минути. Този супернатант, съдържащ сурова ДНК, се използва при PCR амплификация съгласно Carozzi et al. (1991).

    Олигонуклеотидни PCR праймери

    Пет чифта универсални праймери (директни и обратни) бяха използвани за изследване на 5 Плачи-кодиращи гени по размери от PCR продукти. Последователностите, разпознатият ген и очакваните размери на Cry-гена на PCR продуктите са представени в Таблица 1.

    Реакционна смес за амплификация

    Два микролитра ДНК (около 20 ng) бяха изолирани от всяка Bt напрежение, Taq Ензим ДНК полимераза (1 единица), 10X буфер (2 μl), 2 μl MgCl2 (2500 μM), 2 μl dNTPs (2500 μM), 2 μl праймер (10 pmol) и 14,8 μl H2O (Miniatis 1989).

    Цикли на амплификация на ДНК

    Perkin-Elmer GeneAmp PCR система (модел 2400), използвана с програма за температурни цикли, беше приложена, както е описано от Temnykh et al. (2000). Етапите на амплификация се извършват, както следва: един цикъл протича при 94 °C за 5 минути, след това 30 цикъла, състоящи се от денатурация при 94 °C за 1 минута, единична стъпка на отгряване при 55 °C за 1 минута, следваща единична стъпка на синтез при 72 °C в продължение на 2 минути, последвана от една стъпка на удължаване при 72 °C за 7 минути и крайна 4 °C инфинитив. Всеки експеримент е свързан с отрицателни и положителни контроли. Отрицателната контрола се провежда в отсъствие на ДНК шаблон, а положителната контрола се провежда със стандартен шаблон. PCR продуктите се оценяват чрез електрофореза, като се използват 1.4% агарозни гелове, след завършване на електрофорезата геловете се оцветяват с етидиев бромид и се използва UV светлина за заснемане на снимките. ДНК стълба от сто базови двойки, закупена от Pharmacia, беше приложена за достъп до размерите на лентите на PCR продукта.

    Насекоми

    Насекомите, използвани в това изследване, са египетският памучен листен червей, Spodoptera littoralis (Boisd.) (Lepidoptera: Noctuidae) и плодовата муха, Drosophila melanogaster Meigen (Diptera: Drosophilidae). Необходимите етапи от двете насекоми бяха любезно предоставени от г-н Ибрахим Хамед и г-жа Марва ел-Салех, отдел за растителна защита, Факултет по земеделие, Египет.

    Биологичен анализ

    Спорово-кристални смеси от Bt изолати се приготвят съгласно Ammouneh et al. (2011). Единична колония от предварително идентифицирани Bt щамове се култивират в 100 ml Т3 течна среда и се инкубират в шейкър (150 rpm) при 30 °С в продължение на 5 дни. Кристални протеини и Bt спорите се събират и суспендират в 1000 mM NaCl, центрофугират се при 10 000 rpm при 4 ° С в продължение на 10 минути, промиват се с SDW два пъти, по-късно се суспендират в SDW и се подлагат на сушене чрез замразяване. И двете Bt кристали и спорови прахове се използват в по-нататъшната експериментална работа. Биоинсектицидни потенциали на местното население Bt щамовите изследвания в тази работа са тествани срещу ларвите на памуковия листен червей (S. littoralis) и плодовата муха (D. melanogaster). Десет от тествани ларви от 3-та до 4-та възраст бяха поставени в 30-ml пластмасови чаши в 3 повторения, с общ брой от 30 ларви за всяка концентрация, която се поддържаше при 27 ± 2 °C, 60–65% RH и 14:10 h (светло:тъмно). Пет милилитра (ug/ml -1) от всеки натив Bt щам лиофилизирани прахове от сместа от кристали и спори бяха въведени в ларвите и оставени при стайна температура (Aramideh et al. 2010). Резултатите от оценката на смъртността се записват след 24 и 48 часа за всяко третиране. За изчисляване на стойностите на LC беше използвана програма за анализ Probit версия 1.350 и наклон. Експериментите за биологичен анализ бяха проведени с използване на смес от спори и кристали, която беше събрана от всеки Bt изолирайте поотделно и приготвените серийни концентрации варират от 25 до 50 μg/ml -1 в стерилна дестилирана вода (dH2О). Техниката на потапяне на листа е използвана за тестваните ларви на памуков листен червей. Пресни и чисти листа се потапят за 30 s във всяка оригинална концентрация на изолат Bt смес от спори и кристали поотделно и се предлага на ларвите в ранна възраст на S. littoralis ларви. За контрол същият брой ларви се излагат на чисти листа, потопени в dH2О само. Също така, 20 g от прясно приготвена храна за изкуствена плодова муха се смесват добре с всеки оригинален изолат на Bt концентрации.

    Молекулно типизиране на нативни щамове

    Въз основа на резултатите от инсектицидния биоанализ, щамовете на Bt които изразяват най-висока инсектицидна активност срещу Diptera и Lepidoptera са избрани за молекулярно типизиране на 16S rRNA съгласно методите на Rochelle et al. (1995). За анализ на 16S rRNA бяха използвани универсални праймери за 16S rRNA, преден праймер 8F 5′AGT TGA TCC TGG CTC AG 3′ и обратен праймер 1492R 5′TAC CTT GTT ACG ACT T3′. ДНК шаблони бяха изолирани от 4 нативни (Bt) щамове, използвани в този експеримент. Реакцията се провежда, както следва: 50 μl от реакционната смес включва ДНК шаблонен буфер, 16S генен праймер, Taq полимераза, dNTPs и MgCl2. Програмата за PCR се извършва в Bio-RAD i-cycler със следните стъпки: (а) 94 °C за 40 s, зададени за денатурация, (b) 55 °C за 50 s, зададени за отгряване, (c) 72 °C за 1,5 минути, зададени за удължаване, всички работещи над 35 цикъла, началната температура на денатурация беше 94 ° C за 3 минути и 72 ° C за 7 минути за окончателното удължаване. Използвана е електрофореза с 1,5% агарозен гел за анализ на фрагментите на PCR резултата. Агарозните гелове бяха пречистени съгласно каталога на комплекта за пречистване, закупен от (Promega Wizard SV Gel и PCR Clean Up-system Kit кат. #A9282). Пречистените PCR продукти бяха изпратени за секвениране в Macrogen (Южна Корея). Алгоритъмът на взрива в базата данни на NCBI беше използван за задаване на сравнение между местните Bt последователности и документираните Bt последователности (Bt1, Bt9, Bt10, и Bt11) се съхраняват в NCBI (Altschul et al. 1990).

    Филогенезата на местните щамове Bt1, Bt9, Bt10 и Bt11

    Генните последователности на 16S rRNA бяха сравнени и изпратени в базата данни на GeneBank въз основа на нуклеотид-нуклеотидния стандартен алгоритъм BLAST. Софтуерът MEGA5 беше използван за подравняване на последователностите и филетичната линия беше анализирана и дървото беше конструирано. Методът на присъединяване към съседите извежда историята на еволюцията сред таксоните. Бяха взети хиляда повторения, за да представят еволюционната история на анализираните таксони и може да се направи извод за първоначалното консенсусно дърво (Saitou and Nei 1987).


    54 студенти получиха грантове на Erickson Discovery от бакалавърско образование

    UNIVERSITY PARK, Пенсилвания — Грантовете на Erickson Discovery бяха отпуснати на 54 студенти от Penn State за покриване на разходите, свързани с бакалавърските изследвания.

    Програмата Erickson Grant се администрира от Службата за бакалавърско образование и помага за покриване на разходите за изследвания като консумативи, материали, книги, софтуер и пътувания за целите на събирането на данни.Грантът може да се използва за всички аспекти на стипендията и творческия процес, включително концептуализиране, писане на предложения, идентифициране и прилагане на методи и съобщаване на резултатите. Всички проекти се изпълняват под ръководството на преподавателите. Въпреки че проектът трябва да бъде предимно собствена работа на студента, той може да бъде част от изследване на по-голям член на факултета.

    Програмата е кръстена в чест на Родни А. Ериксън, 17-ият президент на Penn State.

    Тазгодишните получатели на грант Ериксън идват от много колежи и кампуси в Penn State:

    • Остин Олбрайт, „Влияние на загрижеността за честта върху емоционалното потискане и психичното здраве“, управление на бизнеса/маркетинг, Penn State York
    • Софи Андерлинд, „Изследване на ефектите на кортизола от транспортните протеини на желязо в плацентарните клетки“, биология, Penn State Behrend
    • Шраван Астхана, „Изследване на ролята на RBM8a при образуването на синапс – глиална леща“, биология, Колеж по наука Eberly
    • Британи Бейкорн, „Влияе ли използването на социални медии върху симптоматиката за тези с обсесивно-компулсивно разстройство по време на пандемията COVID-19?“ психология, Penn State Beaver
    • Harshraj Bandyopadhyay, „Изследване на локализирано охлаждане на фотоумножителни тръби с помощта на термоелектрически охлаждащи устройства“, физика, Eberly College of Science
    • Тейлър Берек, "Изследване на промяната на субпопулацията на протеин DDLB, причинена от синонимни мутации чрез Cryo-EM", биомедицинско инженерство, Инженерен колеж
    • Михир Бхатнагар, „Обитаемост на Exomoon около M-джуджета, използващи ретроградни орбити“, машинно инженерство, Инженерен колеж
    • Рейчъл Блансфийлд, „Асоциацията между стила на привързаност на възрастните и терапевтичния алианс: Мета-аналитично изследване“, психология, Колеж по свободни изкуства
    • Абриана Кейн, „Ефектът от физическата активност и енергийното ограничение върху туморната хипоксия и нормализирането на кръвоносните съдове в модела на рак на гърдата на миши 4T1.2“, хранителни науки, Колеж по здравеопазване и човешко развитие
    • Мичъл Корси, „Пречистване на дъждовни води с използване на биовъглен при екстремни климатични събития“, инженерство на екологичните системи, Колеж по науки за Земята и минералите
    • Алиса Къри, Въздействие на манипулирането на пролетните разплоди върху популациите на акарите вароа в пчелните колонии, управление на екологичните ресурси, Колеж по селскостопански науки
    • Сидни Дансо, „Честота на откриване на гигантски импулси от пулсара на мъглявината рак“, биохимия, Penn State Abington
    • Eilene B. Deng, „Идентифициране на регионите на DSIF, участващи в набирането на NELF“, биохимия и молекулярна биология, Eberly College of Science
    • Моли Ериг, „Ефект на сигналните молекули върху щамовото разнообразие на симбиозата Euprymna-Vibrio“, биология, Eberly College of Science
    • Грегъри Елсуърт, „Мониторинг на скалопад в Пенсилвания“, геодезически инженеринг, Penn State Wilkes-Barre
    • Женева Фларенд, „Изследване на ефектите от стреса върху поведението при употреба на опиоиди“, биохимия и молекулярна биология, Eberly College of Science
    • Анна Фолц, „Улавяне на гени в Drosophila melanogaster“, биохимия и молекулярна биология, Eberly College of Science
    • Kaylee Foor, „Разлики по раса и етническа принадлежност в симптомите на тревожност и депресия и ролята на стресовите фактори, свързани с образованието“, психология, Колеж по свободни изкуства
    • Куентин Хейлс, „Числени решения на принудителното уравнение на солитона“, физика, Penn State Fayette
    • Джак Ибинсън, „Ролята на IRE1a и p53 в UVB чувствителността на човешки кератиноцити“, имунология и инфекциозни заболявания, Колеж по селскостопански науки
    • Аби Колар, „Изследване на възстановяване на хранителни вещества и химикали от рециклирана водна фаза на хидротермално втечняване“, химическо инженерство, Инженерен колеж
    • Менгде Лиу, „Стохастичните симулации на резистентност към насочени терапии при рак предполагат компромис между еволюционните траектории“, биомедицинско инженерство, Инженерен колеж
    • Синди Лиу, „Влияние на pH върху фазово разделени капчици като РНК отделения“, химия, Eberly College of Science
    • Никол Лукфонг, „Ендоканабиноидна фармакология на посттравматичното стресово разстройство“, генетика и биология на развитието, Penn State Harrisburg
    • Тара Лайънс, „Теоретични изследвания на метални клъстери върху нанографен за бъдещи материали“, съдебна медицина, Penn State Fayette
    • Катрин Макрури, „Да живееш с природата: етичен модел за архитектура, базирана на съвместно съществуване“, архитектура, Колеж по изкуства и архитектура
    • Абигейл Мелендес, „Разбиране на биоразнообразието на Lepidopteran (пеперуди и молци) в кампуса Penn State Behrend чрез събиране и идентификация с помощта на технология за ДНК баркодиране“, биология, Penn State Erie, The Behrend College
    • Джейкъб Мойер, „Соматостатин невропептид, потенциално средство за лечение на прекомерно пиене и тревожност“, биохимия и молекулярна биология, Eberly College of Science
    • Лорън Онуелър, „Идентифициране на ракови биомаркери и разработване на целева CAR T клетъчна терапия за лечение на остра лимфобластна левкемия“, биомедицинско инженерство, Инженерен колеж
    • Aayushi Patel „Изследване на антимикробния потенциал на канабиноидите, получени от Cannabis sativa (индустриален коноп)“ биология, генетика и развитие Penn State Harrisburg
    • Ванеса Педуци, „Лечение на остра миелогенна левкемия при мишки чрез прилагане на таблетки с плаваща матрица Δ12-простагландин-J2“, имунология и инфекциозни заболявания, Колеж по селскостопански науки
    • Хана Перели, „Оръжейна вода: Как колониалната политика е изострила непропорционалното опустошение от COVID 19 в навахо”, география, Колеж по науки за Земята и минералите
    • Джак Пиаца, „Изследване на връзката между алгоритмичната случайност и равномерното разпределение по модул едно“, математика, Eberly College of Science
    • Клои Робъртс, „Оценяване на тежестта на Ixodes scapularis върху Sylvilagus floridanus в предградията на централна Пенсилвания“, ветеринарни и биомедицински науки, Колеж по селскостопански науки
    • Келси Рулман, „Експресия и функция на SETDB1 в яйчниците на обикновения домашен паяк, Parasteatoda tepidariorum“, генетика и биология на развитието, Penn State York
    • Танер Шери, „Метод, базиран на импеданс за наблюдение на динамиката на извънклетъчното пространство по време на разпространение на деполяризация“, инженерни науки, Инженерен колеж
    • G. Michael Shott Jr., „Beats, Rhymes and Life: An Autoethnography“, комуникационни изкуства и науки, Penn State Berks
    • Джордан Сиглер, „Срещане лице в лице с депресията: Въздействието на тежестта на депресията върху възприятието на емоциите“, психология, Колеж по свободни изкуства
    • Мария Смерека, „Оптимизиране на метода за флуорогенно откриване на AggTag със SNAP- и Sortase-tags“, невробиология, Eberly College of Science
    • Емили Сноу, „Ефекти от ориентацията на нановлакната върху клетъчната морфология и ранната остеоиндуктивна регулация за диференциация на човешки мезенхимни стволови клетки“, биомедицинско инженерство, Инженерен колеж
    • Елизабет Соуси, „Ефектът на кортизола върху човешката лактация и състава на млякото“, хранителни науки, Колеж по здравеопазване и човешко развитие
    • Едуард Джоузеф Спаньоло, „Единствените известни изкопаеми флори на Палеоген Пакистан: разкриване на сблъсъка между Индия и Азия чрез палеоботаника“, геобиология, Колеж по земни и минерални науки
    • Закари Стайн, „Внедряване на кинетично движение в керамичното изкуство“, бакалавър по изящни изкуства, фокусиран в керамика, Колеж по изкуства и архитектура
    • Жаклин Стохел, „Събиране на данни за оценка на конкретността при по-възрастни“, комуникационни науки и разстройства, Колеж по здравеопазване и човешко развитие
    • Ребека Строшайн, „Оценка на онлайн обучение за подкрепа на взаимодействието между лица, използващи усилваща и алтернативна комуникация (AAC) и здравни специалисти“, комуникационни науки и разстройства, Колеж по здравеопазване и човешко развитие
    • Дейвид Талиери, „Градски улични мрежи: Кръгови кръстовища срещу традиционни кръстовища“, гражданско инженерство, Инженерен колеж
    • Оливия Танкреди, „Изследване на ефектите от повърхностната химия на наночастиците върху преноса на заряд и фотокаталитичната реактивност“, химия, Eberly College of Science
    • Matthew Venable, „Разработване на нови цитратни полимерни базирани ортопедични композити за инжектиране на място“, инженерни науки, Инженерен колеж
    • Натали Уолтър, „Архитектурата на упадъка“, архитектура, Колеж по изкуства и архитектура
    • Zhijie Wang, „Ефект на йоните на Хофмайстер върху оптичните свойства на родамин 6G“, химия, Eberly College of Science
    • Лорън Уилет, „Интерпретиране на сигнатури за натрупване на млади звездни обекти от VIRUS Spectrograph“, астрономия и астрофизика, Eberly College of Science
    • Танер Волф, „Полимеризация на метатеза при отваряне на пръстен на стерично затруднени циклофани“, химия, Eberly College of Science
    • Александър Ву, „Сравнителен анализ на „пруските“ квартети на Моцарт и оп. 5 сонати за виолончело“, музикално изпълнение, Колеж по изкуства и архитектура
    • Грант Земанек, „Може ли управлението на местообитанията да помогне на нецелеви видове?“ биология, Eberly College of Science

    Кандидатстване за грант за откритие на Erickson

    Подробности за гранта Erickson Discovery могат да бъдат намерени на уебсайта за бакалавърски изследвания и наставничество за стипендии. Приложенията обикновено се отварят през октомври и приключват през февруари. Получателите на безвъзмездни средства се уведомяват късно през пролетния семестър.


    Съдържание

    Hepialidae представляват най-разнообразната група от инфраразред Exoporia. 60-те рода съдържат най-малко 587 признати понастоящем вида от тези примитивни молци по целия свят. Родовете Fraus (ендемичен за Австралия), Газориктра (холарктически), Афротеора (Южноафрикански) и Antihepialus (африканските) се считат за най-примитивните, съдържащи четири рода и около 51 вида с предимно реликтално разпространение в южната част на Гондвана и в момента са отделени от Hepialidae sensu stricto които могат да образуват естествена, производна група. [2] Най-разнообразни са родовете Oxycanus със 73 вида, Ендоклита с 60 вида, Титародес с 51 вида и Сибира с 50 вида след изчерпателен каталог на Exoporia. [2] Взаимоотношенията на много родове все още не са добре установени, вижте по-долу за подреден синонимичен общ контролен списък [2] и Taxobox за навигация.

    Семейството Hepialidae се счита за много примитивно, с редица структурни различия спрямо други молци, включително много къси антени и липса на функционален хобот или френулум (вижте Kristensen, 1999: 61–62 за подробности). [3] Подобно на други Exoporia, сперматозоидите се прехвърлят към яйцеклетката чрез външен канал между устието и яйцеклетката. Други недитризийски молци имат обща клоака. [2] Пеперудите са еднородни с подобни предни и задни крила и понякога се включват като „почетни“ членове на Macrolepidoptera, въпреки че са архаични. Строго погледнато, те са филогенетично твърде базални и представляват Microlepidoptera, въпреки че хепиалидите варират от много малки молци до рекорд на размах на крилете от 250 mm в Злотипия. [2] Поради техния понякога големи размери и впечатляващи цветови модели, те са получили по-популярно и таксономично внимание от повечето „микро“. Много видове показват силен полов диморфизъм, като мъжките са по-малки, но по-смело отбелязани от женските, или на висока височина, женските от Фармацевт и Аорая показват "брахиптерно" намаляване на крилата. [4]

    Hepialidae са разпространени на древни земни масиви по целия свят, с изключение на Антарктида, но с изненадващите изключения на Мадагаскар, Карибските острови и в Африка, тропическа Западна Африка. Остава да се установи дали тези отсъствия са реални като Aenetus cohici не много отдавна е открит в Нова Каледония. [5] В ориенталските и неотропичните региони хепиалидите са се диверсифицирали в околна среда на тропическите гори, но това очевидно не е така в афротропиците. [2] Хепиалидите имат предимно ниска дисперсионна сила и не се срещат на океанските острови с изключение на Фазоди на Фиджи и Западна Самоа и няколко вида в Япония и Курилските острови. Докато типът местност на Eudalaca sanctahelena е от отдалечения остров Света Елена, смята се, че това е грешка за Южна Африка. [2]

    Бързите молци обикновено са крепукулярни и някои видове образуват леки, за които също се смята, че са възникнали независимо в рода Огигиози (Palaeosetidae). [3] В повечето родове мъжките летят бързо към девствените женски, които викат с аромат. В други родове девствените женски се „сглобяват“ срещу вятъра, за да показват мъже, [6] които излъчват мускусен феромон от люспи на метаторакалните пищяли. В такива случаи на смяна на половата роля може да има и визуални сигнали: мъжките от европейската призрачна бърза са вероятно най-често забелязваният вид, като са бели, призрачни и забележими, когато образуват лек при здрач. [7] Понякога те се движат поотделно, сякаш са окачени за нишка или летят в движение на осмица. [2] Анализирани са химичните структури на някои феромони. [8]

    Женската не снася яйцата си на определено място, а ги разпръсква („излъчва“) по време на полет, понякога в огромен брой (29 000 са записани от една женска Триктена, [9] което вероятно е световен рекорд за Lepidoptera). Подобните на личинки ларви [10] се хранят по различни начини. Вероятно всички Exoporia имат скрити ларви, правейки копринени тунели във всякакви субстрати. Някои видове се хранят с листна постеля, гъби, [11] мъхове, гниеща растителност, папрати, голосеменни растения и широка гама от едносемеделни и двусемеделни растения. [2] [12] Има много малко доказателства за специализация на растенията гостоприемници, докато южноафриканските видове Лето Венера е ограничено до дървото Virgilia capensis това може да е случай на "екологична монофагия". [2] Няколко се хранят с зеленина (австралските родове „оксиаканин“, които могат да влачат зеленина в своя тунел за хранене: Nielsen et al., 2000: 825). Повечето се хранят под земята с фини корени, поне в ранните етапи, а някои след това се хранят вътрешно в тунели в стъблото или ствола на своите растения гостоприемници. Ларвите, които се хранят с корени, пътуващи през почвата, правят тунели, облицовани с коприна. Преди какавидиране те правят вертикален тунел, който може да бъде с дълбочина до 10 см, с изход близо до повърхността на земята. [13] След това какавидите могат да се катерят нагоре и надолу, за да се приспособят към промените в температурата и наводненията. [14] Преди да се появи възрастният молец, какавидата стърчи наполовина на повърхността на земята. Какавидата има редици от гръбни шипове на коремните сегменти, както при други долни членове на Heteroneura. [3]

    Китайската медицина използва значително "мумиите", събрани от гъбичките, атакуващи гъсениците Ophiocordyceps sinensis, и те могат да образуват скъпа съставка. [2] [15] [16] Величината личинка (която понякога са хепиалидни ларви) е популярен източник на храна, особено сред аборигенните австралийци. В Централна и Южна Америка хепиалидни ларви също се ядат. [17] Въпреки това, някои видове от Wiseana, Онкопера, Oxycanus, Fraus и Далака се считат за вредители по пасищата в Австралия, Нова Зеландия и Южна Америка. [2]


    Гледай видеото: Проективная идентификация + примеры из жизни (Може 2022).